大腸がん微小転移巣形成機構の理解による新規予防治療戦略の確立
研究課題情報
- 課題管理番号
- 22ck0106541h0003
- 統合プロジェクト(二期)
疾患基礎研究プロジェクト<第二期>
- 事業名
革新的がん医療実用化研究事業
- タグ(2022)
研究の性格: 生命・病態解明等を目指す研究
開発フェーズ: 基礎的
承認上の分類: 医薬品
対象疾患: その他
疾患領域: がん
開発目的: 予防・健康 , 治療
- タグ(2021)
研究の性格: 生命・病態解明等を目指す研究
開発フェーズ: 基礎的
承認上の分類: 医薬品
対象疾患: その他
疾患領域: がん
開発目的: 予防・健康 , 治療
- タグ(2020)
研究の性格: 生命・病態解明等を目指す研究
開発フェーズ: 基礎的
承認上の分類: 薬機法分類非該当
対象疾患: その他
疾患領域: がん
開発目的: 予防・健康 , 診断 , 治療
- 代表研究機関
- 国立大学法人金沢大学
- 研究代表者
(2022) 大島正伸, 国立大学法人金沢大学, がん進展制御研究所・教授
(2021) 大島正伸, 国立大学法人金沢大学, がん進展制御研究所・教授
(2020) 大島正伸, 国立大学法人金沢大学, がん進展制御研究所・教授
- 研究期間
- 2020年度 - 2022年度
- 課題への総配分額
- 68,900 千円
- 研究概要(2022)
- 原発巣のがん組織から遺伝的多様性を維持したまま細胞塊が離脱し、クラスターとして血流を介して遠隔臓器に転移巣を形成するという「ポリクローナル転移」の概念が提唱されている。本研究課題では、ヒト大腸がん検体から樹立したオルガノイドを用いて、免疫不全マウス脾臓への移植実験により、大腸がん細胞の肝臓へのポリクローナル転移機構について検証する。これまでに、マウス実験において、転移性リーダークローンが転移ニッチの形成を介して非転移性サブクローンの生存と増殖を亢進し、肝臓にポリクローナル転移巣を形成することを明らかにした。さらに、ヒト大腸がん組織から転移性オルガノイドの樹立を行った。これらの結果および材料を用いて、今年度は、ヒト大腸がんの原発巣および転移巣をそれぞれ構成する、転移性リーダークローンと非転移性サブクローンをバーコード等で標識し、ポリクローナル転移巣の形成機構を検証する。
- 研究概要(2021)
- がんによる死亡の多くは転移・再発が原因であり、転移がんに対する有効な予防治療薬開発のためにも、その生物学的メカニズムの解明が重要である。本課題では、悪性化大腸がん細胞による肝臓の微小転移巣での線維性ニッチ形成誘導機構を明らかにし、その制御分子の特定を目指した研究を推進する。その目的達成のために、複数のドライバー遺伝子変異を異なる組み合わせで導入した、悪性度の異なるマウス腸管腫瘍オルガノイドを用いた移植実験、およびヒト大腸がん組織を用いた解析を中心に研究を実施する。今年度は、転移性AKTP細胞による線維性ニッチ形成モデルを作製し、ニッチによるがん細胞生存・増殖への影響を明らかにする。また、肝星細胞(HCS)と悪性化がん細胞の相互作用による活性化の分子機構について、細胞培養実験および遺伝子発現解析により明らかにする。
- 研究概要(2020)
- がんによる死亡の多くは転移・再発が原因であり、転移がんに対する有効な予防治療薬開発のためにも、その生物学的メカニズムの解明が重要である。本課題では、悪性化大腸がん細胞による肝臓の微小転移巣での線維性ニッチ形成誘導機構を明らかにし、その制御分子の特定を目指した研究を推進する。その目的達成のために、複数のドライバー遺伝子変異を異なる組み合わせで導入した、悪性度の異なるマウス腸管腫瘍オルガノイドを用いた移植実験、およびヒト大腸がん組織を用いた解析を中心に研究を実施する。今年度は、転移性AKTP細胞を脾臓に移植した際の線維性ニッチ形成誘導について、経時的な解析により組織発生を明らかにする。また、肝星細胞(HCS)を単離して、悪性化がん細胞による活性化誘導について、細胞培養実験により明らかにする。HSCの関与については、HSC活性化因子であるTGF-の受容体遺伝子欠損マウスを用いた移植実験により検証する。
研究成果情報
2022
2021
2020
成果の概要
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本研究では、大腸がん細胞の肝転移巣形成における、線維性微小環境形成機構と、その役割を明らかにすることを目的として実施する。とくに、肝星細胞(Hepatic stellate cells, HSCs)活性化による線維性微小環境と、その役割に着目して研究を推進する。さらに、微小環境形成阻害による転移巣形成抑制について検証し、大腸がんの転移・再発の予防戦略を確立する。
研究代表者らはこれまでに、オルガノイド移植モデルを用いた個体レベルの研究を推進し、AKTP細胞などの悪性化がん細胞が肝臓類洞に到達後、周囲のHSCを活性化させて繊維性微小環境を形成し、がん細胞の生存と増殖を促進することが明らかにした。また、転移性を獲得した悪性腸がんオルガノイドの培養上清で刺激したHSCを用いたRNAseq解析により、活性化HCSではケモカインやサイトカインの発現が上昇しており、Toll様受容体を介した自然免疫反応や、プロスタグランジン受容体を介した炎症反応のシグナル経路が活性化していることが明らかとなった。そこで、TLR受容体遺伝子、プロスタグランジン受容体遺伝子、及び炎症反応に重要な転写因子であるNF-κB、Stat3の各遺伝子受容体欠損マウスにAKTP細胞を移植すると、宿主側の細胞における自然免疫およびプロスタグランジンによるシグナル経路の遮断が、転移巣形成効率を有意に低下させることが明らかとなった。以上の結果から、これらのシグナル経路は大腸がんの予防治療標的として重要と考えられた。
さらに、分担研究者の三森らは、進行大腸がんを対象に空間的シングルセル解析(VISIUM)を実施し、浸潤先進部のがん細胞がマクロファージをM1型からSPP1+へ誘導して悪性度に寄与することを明らかにした。さらに、良性腫瘍である大腸腺腫は、がん細胞の境界領域で蛋白を分泌し制御性T細胞(Tregs)を誘導することを示唆する結果を得て、個体レベルで検証した。大腸がん発生過程では、良性の時期より微小環境形成に関与して免疫寛容を誘導する可能性が示され、がん微少環境は大腸がんの早期診断・予防治療の標的となる可能性が考えられた。
研究代表者らはこれまでに、オルガノイド移植モデルを用いた個体レベルの研究を推進し、AKTP細胞などの悪性化がん細胞が肝臓類洞に到達後、周囲のHSCを活性化させて繊維性微小環境を形成し、がん細胞の生存と増殖を促進することが明らかにした。また、転移性を獲得した悪性腸がんオルガノイドの培養上清で刺激したHSCを用いたRNAseq解析により、活性化HCSではケモカインやサイトカインの発現が上昇しており、Toll様受容体を介した自然免疫反応や、プロスタグランジン受容体を介した炎症反応のシグナル経路が活性化していることが明らかとなった。そこで、TLR受容体遺伝子、プロスタグランジン受容体遺伝子、及び炎症反応に重要な転写因子であるNF-κB、Stat3の各遺伝子受容体欠損マウスにAKTP細胞を移植すると、宿主側の細胞における自然免疫およびプロスタグランジンによるシグナル経路の遮断が、転移巣形成効率を有意に低下させることが明らかとなった。以上の結果から、これらのシグナル経路は大腸がんの予防治療標的として重要と考えられた。
さらに、分担研究者の三森らは、進行大腸がんを対象に空間的シングルセル解析(VISIUM)を実施し、浸潤先進部のがん細胞がマクロファージをM1型からSPP1+へ誘導して悪性度に寄与することを明らかにした。さらに、良性腫瘍である大腸腺腫は、がん細胞の境界領域で蛋白を分泌し制御性T細胞(Tregs)を誘導することを示唆する結果を得て、個体レベルで検証した。大腸がん発生過程では、良性の時期より微小環境形成に関与して免疫寛容を誘導する可能性が示され、がん微少環境は大腸がんの早期診断・予防治療の標的となる可能性が考えられた。
学会誌・雑誌等における論文一覧
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1. Morita A, Nakayama M, Wang D, Murakami K, Oshima M. Frequent loss of metastatic ability in subclones of Apc, Kras, Tgfbr2 and Trp53 mutant intestinal tumor organoids. Cancer Sci, 114: 1437-1450, 2023.
2. Wang D, Nguyen HG, Nakayama M, Oshima H, Sun L, Oshima M, Watanabe S. Mapping nanomechanical properties of basal surface in metastatic intestinal three-dimentional living organoids with high-speed scanning ion conductance microscopy. Small, 2206213, 2022. doi: 10.1002/smll.202206213
3. Dawson RE, Deswaerte V, West AC, Tang K, West AJ, Balic JJ, Gearing LJ, Saad MI, Yu L, Wu Y, Bhathal PS, Kumar B, Chakrabarti JT, Zavros Y, Oshima H, Klinman DM, Oshima M, Tan P, Jenkins BJ. STAT3-mediated upregulation of the AIM2 DNA sensor links innate immunity with cell migration to promote epithelial tumorigenesis. Gut, 71: 1515-1531, 2022. doi: 10.1136/gutjnl-2020-323916.
4. Tang K, McLeod L, Livis T, West AC, Dawson R, Yu L, Balic JJ, Chonwerawong M, Wray-McCann G, Oshima H, Oshima M, Deswaerte V, Ferrero RL, Jenkins BJ. Toll-like receptor 9 promotes initiation of gastric tumorigenesis by augmenting inflammation and cellular proliferation. Cell Mol Gastroenterol Hepatol, 14: 567-586, 2022. doi: 10.1016/j.jmch.2022.06.002.
5. Kitagawa A, Osawa T, Noda M, Kobayashi Y, Aki S, Nakano Y, Saito T, Shimizu D, Komatsu K, Sugaya M, Takahashi J, Kosai K, Takao S, Motomura Y, Sato K, Hu Q, Fujii A, Wakiyama H, Tobo T, Uchida H, Sugimachi K, Shibata K, Utsunomiya T, Kobayashi S, Ishii H, Hasegawa T, Masuda T, Matsui Y, Niida A, Soga T, Suzuki Y, Miyano S, Aburatani H, Doki Y, Eguchi H, Mori M, Nakayama KI, Shimamura T, Shibata T, Mimori K. Convergent Genomic Diversity and Novel BCAA Metabolism in Intrahepatic Cholangiocarcinoma. Br J Cancer, published online. doi: 10.1038/s41416-023-02256-4.
6. Masuda T, Ueo H, Okumura Y, Kai Y, Ando Y, Masuguchi K, Kitagawa M, Kitagawa A, Hayashi N, Tsuruda Y, Hisamatsu Y, Suehiro S, Ohmura H, Fujiyoshi K, Tanaka F, Mimori K. Dynamic Changes in Peripheral Systemic Immunity Markers During Chemotherapy in HER2-negative Advanced Breast Cancer. Cancer Genomics Proteomics, 20:182-194, 2023. doi: 10.21873/cgp.20373.
7. Ozato Y, Kojima Y, Kobayashi Y, Hisamatsu Y, Toshima T, Yonemura Y, Masuda T, Kagawa K, Goto Y, Utou M, Fukunaga M, Gamachi A, Imamura K, Kuze Y, Zenkoh J, Suzuki A, Niida A, Hirose H, Hayashi S, Koseki J, Oki E, Fukuchi S, Murakami K, Tobo T, Nagayama S, Uemura M, Sakamoto T, Oshima M, Doki Y, Eguchi H, Mori M, Iwasaki T, Oda Y, Shibata T, Suzuki Y, Shimamura T, Mimori K. Spatial and single-cell transcriptomics decipher the cellular environment containing HLA-G+ cancer cells and SPP1+ macrophages in colorectal cancer. Cell Rep, 2023 Jan 31;42(1):111929. doi: 10.1016/j.celrep.2022.111929.
8. Nagayama S, Kobayashi Y, Fukunaga M, Sakimura S, Sugimachi K, Sasaki S, Masuda T, Mafune KI, Oshima M, Shibata T, Suzuki Y, Mimori K. Mutated genes on ctDNA detecting postoperative recurrence presented reduced neoantigens in primary tumors in colorectal cancer cases. Sci Rep, 13:1366, 2023. doi:10.1038/s41598-023-28575-3.
9. Nambara S, Masuda T, Hirose K, Hu Q, Tobo T, Ozato Y, Kurashige J, Hiraki Y, Hisamatsu Y, Iguchi T, Sugimachi K, Oki E, Yoshizumi T, Mimori K. Rab27b, a Regulator of Exosome Secretion, Is Associated With Peritoneal Metastases in Gastric Cancer. Cancer Genomics Proteomics, 20:30-39, 2023. doi:10.21873/cgp.20362.
10. Mochizuki K, Kudo SE, Kato K, Kudo K, Ogawa Y, Kouyama Y, Takashina Y, Ichimasa K, Tobo T, Toshima T, Hisamatsu Y, Yonemura Y, Masuda T, Miyachi H, Ishida F, Nemoto T, Mimori K. Molecular and clinicopathological differences between depressed and protruded T2 colorectal cancer. PLoS One, 17: e02735662, 2022. doi: 10.1371/journal.pone.0273566.
学会・シンポジウム等における口頭・ポスター
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1. Oshima M. Modeling polyclonal metastasis of colon cancer by organoids. 115th Annual Meeting of American Association of Cancer Research (AACR), 2022/4/11, 国外, 口頭.
国外 / 口頭
2. Oshima H, Nakayama M, and Oshima M. Preclinical model of cholangiocarcinoma by cooperation of oncogenic activation and COX-2/PGE2-assocaited inflammation. 7th JCA-AACR Special Joint Conference, 2022/7/9-10, 国内, ポスター.
国内 / ポスター
3. Oshima M. Polyclonal metastasis of genetically and phenotypically distinct intestinal tumor oganoids. 12th AACR-JCA Joint Conference, (Lahaina, Maui, USA) ,2022/12/12, 国外,口頭.
国外 / 口頭
4. 大島正伸.大腸がんのポリクローナル転移と線維性微小環境,第46回日本リンパ学会総会,2022/6/4, 国内,口頭.
国内 / 口頭
5. 大島正伸.消化器がんの発生と悪性化における宿主反応–マウスモデルからの知見–,第26回日本がん分子標的治療学会学術総会,2022/6/29, 国内,口頭.
国内 / 口頭
6. Oshima H, Nakayama M, Terakado Y, Oshima M. Wnt signaling-dependent malignant progression of gastric cancer.第81回日本癌学会学術総会,2022/9/29, 国内,口頭.
国内 / 口頭
7. Oshima M, Wng D, Nakayama M, Oshima H. Modeling development and malignant progression of intestinal tumors in mice. 第81回日本癌学会学術総会,2022/9/29, 国内,口頭.
国内 / 口頭
8. Nakayama M, Oshima H, Oshima M. The mechanisms of Wnt hyperactivation in intestinal tumor cells that carry gain-of-function p53 mutation. 第81回日本癌学会学術総会,2022/9/30, 国内,口頭.
国内 / 口頭
9. Wang D, Nakayama M, Oshima H, Oshima M. Activin promote intestinal tumor cell metastasis by interacting with gain-of-function mutant p53. 第81回日本癌学会学術総会,2022/9/29, 国内,ポスター.
国内 / ポスター
10. Morita A, Nakayama M, Oshima H, Oshima M. Heterogeneity of liver metastatic ability in the same driver gene mutations of colorectal cancer. 第81回日本癌学会学術総会,2022/10/1, 国内,ポスター.
国内 / ポスター
「国民との科学・技術対話社会」に対する取り組み
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1. がんの発生と悪性化に向かうメカニズム,大島正伸,AMEDがんシンポジウム「しる×しる×みちる がん治療の最前線〜がんと老化〜」,2023/3/11,国内.
国内