肺癌組織におけるバクテリアの存在を検証することを目的として、肺癌患者検体を用いたLPS組織免疫染色と16SrRNAFISHによる、癌組織におけるバクテリアの検出系の確立に着手した。
LPS組織免疫染色については、ポジコンである大腸上皮組織やメラノーマ組織を用いて組織の前処理、賦活化条件、抗体濃度の条件検討を実施して、プロトコルを最適化した。この染色条件に置いて肺癌3検体を解析したところ扁平上皮癌に置いてLPS陽性像を得ることに成功した。
16SrRNA FISHにおいては、ポジコンである腸管上皮の染色像は確認され、プローブが正常にワークすることが確認できた。
共同研究者により、肺癌腫瘍細胞株 A549と緑膿菌を用いた、細菌3D co-cultureが実施された。肺癌腫瘍細胞と細菌を共培養することにより腫瘍細胞にバイオフィルムが形成することが確認された。
またCAR-T細胞を用いたin vitroおよび invivo試験系の構築することを目的として、HER2 CAR-T細胞の培養法を確立した。現時点で、HER2 CAR-T細胞の培養を実施したところ、CAR発現率45%のCAR-T細胞の培養に成功した。また、免疫フェノタイプの解析を行ったところ、ナイーブ/ステムセルメモリー48.9％、セントラルメモリー7.35%,エフェクターメモリー9.07％、ターミナルエフェクター34.8%、疲弊マーカーであるPD1の発現0.84％であった。これらの結果から耐久力の高いCAR-T細胞が製法を確立できた。HER2　CAR-T細胞の細胞障害活性を測定したところ、Effector/Target ratio が5:1で肺癌細胞株A549を90％程度殺傷することを確認した。
患者検体からの菌の培養やメタゲノム解析については今後の課題である。