AMED研究開発課題データベース 日本医療研究開発機構(AMED)の助成により行われた研究開発の課題や研究者を収録したデータベースです。

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研究課題情報

研究課題名
階層的共培養を基礎とするLiver/Gut on-a-chipの開発:インビトロ腸肝循環評価を目指した高度な代謝と極性輸送の再現
課題管理番号
21be0304201h0005
統合プロジェクト
再生・細胞医療・遺伝子治療プロジェクト
9つの連携分野プロジェクト
再生医療実現プロジェクト
事業名
再生医療・遺伝子治療の産業化に向けた基盤技術開発事業 , 再生医療・遺伝子治療の産業化に向けた評価基盤技術開発事業
タグ(2021)
/研究の性格/研究基盤及び創薬基盤の整備研究<創薬技術・ICT基盤・プラットフォーム関係含む>
/開発フェーズ/応用
/承認上の分類/再生医療等製品
/対象疾患/該当なし<対象とする疾患なし>
タグ(2020)
/研究の性格/研究基盤及び創薬基盤の整備研究<創薬技術・ICT基盤・プラットフォーム関係含む>
/開発フェーズ/該当なし
/承認上の分類/薬機法分類非該当
/対象疾患/該当なし<対象とする疾患なし>
タグ(2019)
/研究の性格/医薬品・医療機器等の開発を目指す研究<医療機器開発につながるシステム開発を含む>
/開発フェーズ/応用
/承認上の分類/再生医療等製品
/対象疾患/該当なし<対象とする疾患なし>
タグ(2018)
/研究の性格/研究基盤及び創薬基盤の整備研究<創薬技術・ICT基盤・プラットフォーム関係含む>
/開発フェーズ/基礎的
/承認上の分類/薬機法分類非該当
/対象疾患/該当なし<対象とする疾患なし>
タグ(2017)
/研究の性格/研究基盤及び創薬基盤の整備研究<創薬技術・ICT基盤・プラットフォーム関係含む>
/開発フェーズ/基礎的
/承認上の分類/薬機法分類非該当
/対象疾患/該当なし<対象とする疾患なし>
代表研究機関
国立大学法人東京大学
研究代表者
(2021) 酒井康行 , 国立大学法人東京大学 , 国立大学法人東京大学 大学院工学系研究科化学システム工学専攻・教授
(2020) 酒井康行 , 国立大学法人東京大学 , 国立大学法人東京大学 大学院工学系研究科化学システム工学専攻・教授
(2019) 酒井康行 , 国立大学法人東京大学 , 国立大学法人東京大学 大学院工学系研究科化学システム工学専攻・教授
(2018) 酒井康行 , 国立大学法人東京大学 , 国立大学法人東京大学 大学院工学系研究科化学システム工学専攻・教授
(2017) 酒井康行 , 国立大学法人東京大学 , 国立大学法人東京大学 大学院工学系研究科化学システム工学専攻・教授
研究期間
2017年度-2021年度
課題への総配分額

(単位:千円)

  • 349,800
  • 2021年度
    81,000
  • 2020年度
    111,300
  • 2019年度
    51,500
  • 2018年度
    56,000
  • 2017年度
    50,000
研究概要(2021)
本年度では、1.胆汁回収可能なLiver on-a-chip 2.伸縮培養可能なGut on-a-chipの開発 3.腸肝循環評価が可能なLiver/Gut on-a-chipデバイスの評価、について検討する。前年度までに1.2.のデバイス開発において障害となった物質吸着の高いPDMSに替わる素材の探索と評価を実施し、新たな膜素材の選定は完了した。1.の開発項目では肝の階層的共培養と高機能化した培養系にて胆汁回収可能な培養系を構築し、デバイスの運用・評価を目指す。2.では、伸縮可能な細胞培養膜を空気圧制御によって駆動させることで腸管蠕動運動を再現し、株化細胞由来の腸管上皮細胞(Caco-2細胞)と腸筋繊維芽細胞の共培養かつ膜伸縮で良好な結果を得られたため、次にiPS細胞由来腸管上皮細胞と腸筋繊維芽細胞の共培養と膜伸縮の影響について評価を実施する。また、3.に関しては、非PDMSの酸素透過膜を底面に装着した、On-chipポンプ型のLiver on-a-chipデバイスにて、腸・肝・共培養の機能について評価する。将来的には慢性毒性に関して数理モデルを構築することを目的とする。
研究概要(2020)
本年度では、胆汁回収可能なLiver on-a-chipと伸縮培養可能なGut on-a-chipの開発と運用について検討する。前年度は2つのデバイス開発において障害となった物質吸着の高いPDMSに替わる素材の探索と評価を実施し、新たな膜素材の選定を行った。そのため、Liver on-a-chip開発では肝の階層的共培養と高機能化した培養系にて胆汁回収可能なデバイスの運用試験を目指す。Gut on-a-chip開発では、伸縮可能な細胞培養膜を空気圧制御によって駆動させることで腸管蠕動運動を再現し、その影響をiPS由来腸管細胞と腸筋繊維芽細胞を用いて評価する。また、Liver/Gut on-a-chipデバイスに着手し、腸肝循環評価が可能なデバイス構想の実現化を目指す。
研究概要(2019)
本年度では、胆汁回収可能なLiver on-a-chipと伸縮培養可能なGut on-a-chipのプロトタイプを開発する。Liver on-a-chip開発では、前年度までに構築した肝の階層的共培養モデルにおいて、蓄積されている胆汁を回収できるデバイスを開発する。具体的には、高砂電気工業(株)と共同で、空気圧を利用した回収手法を構築する。Gut on-a-chip開発では、これまでに検討してきている伸縮かつ物質交換が可能なPDMS性の多孔質細胞担体を用いて、空気圧制御下において腸管モデルを安定して培養できる条件を明確にする。
研究概要(2018)
高砂電気工業(株)と共同で設計・作製した灌流型肝組織培養デバイスと,圧力駆動型腸管組織培養デバイスで,肝および腸管の階層的共培養組織の構築および培養条件を明確にする.
研究概要(2017)
PXBマウスおよびiPS細胞由来のヒト肝細胞を酸素透過性PDMS膜表面で組織構築およびその基礎的な生理学的形態評価・肝機能評価と,PDMSベース多孔質膜の腸管モデル共培養系への利用条件を明らかにする.

研究成果情報

【成果報告書】

成果の概要
【研究項目1:多様な肝毒性・胆汁排泄評価を可能とするLiver on-a-chipの開発】
肝・腸管の単培養・共培養が容易に実施可能なオンチップ灌流型デバイスについては,前年度開発を終えたプロトタイプについて,中規模量産・供給体制を構築した.肝らしさの評価において,ユーザーと協力の上,反復投与毒性や自然免疫が関与する薬物性肝障害の試験を行い,操作の容易さ・安定性と共に,酸素直接供給の効果が確認できた.また,同じ酸素透過膜を下面とするプレートを用いたミトコンドリア毒性検証試験にて,高酸素雰囲気培養条件下と同程度の毒性を観測した.一方,胆汁回収については,前駆細胞由来の肝細胞と胆管上皮細胞とからなるオルガノイドにて,微小胆管から胆管様構造への胆汁の排泄・蓄積を達成した.さらに,培養液の工夫にて非付着性ヒト肝細胞を安定した単層培養状態に持ち込むことにも成功している.また,多様なソースのヒト細胞についてスフェロイド形成を行い,形成の可否や形成後の機能向上には大きな差異があることも明らかとした.
【研究項目2:伸縮運動するGut on-a-chipの開発】
前年度にプロトタイプ開発を終えている空気圧によって周期的伸縮を与えるデバイスを用いて,微絨毛の発達や薬物トランスポーターの高発現のためには,腸筋線維芽細胞との共培養下における伸縮が必要であることを明らかとした.また,腸管内容物との摩擦や酸素等の物質供給の改善が腸管上皮細胞の発達に好影響を与えることを見出した.また、前年度にリプロセルから販売が開始されたヒトiPS細胞由来の小腸前駆細胞 (StemRNA Entero)については,通常の培養液に比べて貧栄養であるヒト血漿模倣培地を用いることで,より高い代謝酵素活性を長期に維持することが可能となった.
【研究項目3:腸肝循環を可能とするLiver/Gut on-a-chipの開発】
オンチップ灌流型デバイスを用いたiPS腸管上皮細胞とPXB肝細胞の灌流培養にて,特に酸素透過膜を用いて各細胞に直接酸素を供給しつつ灌流共培養した場合に,同デバイスを用いたそれぞれの単培養と比較hして,解毒代謝関連遺伝子の発現と薬物代謝活性の顕著な亢進が見られた.今後は,多様な薬剤を用いてヒト初回通過効果との相関性を評価すると共に,灌流される培養液を通じた両細胞の相互作用のメカニズムを明らかとする必要がある.
学会誌・雑誌等における論文一覧
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1.Danoy M, Tauran Y, Poulain S, Jellali R, Bruce J, Leduc M, Le Gall M, Koui Y, Arakawa H, Gilard F, Gakiere B, Kato Y, Plessy C, Kido T, Miyajima A, Sakai Y, Leclerc E. Investigation of the hepatic development in the coculture of hiPSCs-derived LSECs and HLCs in a fluidic microenvironment. APL Bioeng. 2021, 5, 026104, doi: 10.1063/5.0041227.

2.Yuta Koui, Misao Himeno, Yusuke Mori, Natsuki Maeda, Luyao Wang, Yoshiko Kamiya, Hiroko Anzai, Tadanori Yamada, Yasuyuki Sakai, Atsushi Miyajima, Taketomo Kido, Development of human iPSC-derived quiescent hepatic stellate cells for drug discovery and in vitro disease modeling, Stem Cell Reports, 16(12), 3050-3063 (2021), doi.org/10.1016/j.stemcr.2021.11.002.

3.Mathieu Danoy; Rachid Jellali; Yannick Tauran; Johanna Bruce; Marjorie Leduc; Francoise Gilard; Bertrand Gakiere; Benedikt Scheidecker; Taketomo Kido; Atsushi Miyajima; Fabrice Soncin; Yasuyuki Sakai, Characterization of the proteome and metabolome of human liver sinusoidal endothelial-like cells derived from induced pluripotent stem cells, Differentiation, 120, 28-35 (2021), doi.org/10.1016/j.diff.2021.06.001.

4.Danoy, Mathieu; Tauran, Yannick; Poulain; Jellali, Rachid; Bruce, Johanna; Leduc, Marjorie; Le Gall; Gilard, Francoise; Kido, Taketomo; Arakawa, Hiroshi; Araya, Karin; Mori, Daiki; Kusuhara, Hiroyuki; Kato, Yukio; Plessy, Charles; Miyajima, Atsushi; Sakai, Yasuyuki; Leclerc, Eric, Multi-omics analysis of hiPSCs-derived HLCs matured on-chip revealed patterns typical of liver regeneration, Biotecnol. Booeng., 118(10):3716-3732 (2021), doi: 10.1002/bit.27667.

5.酒井康行,真に生理学的なOrgan on-a-chip実現のために,実験医学,36, 2563-2566 (2021).

6.Astia Rizki-Safitri, Fumiya Tokito, Masaki Nishikawa, Minoru Tanaka, Kazuya Maeda, Hiroyuki Kusuhara, and Yasuyuki Sakai, Prospect of in vitro bile fluids collection in improving cell-based assay of liver function, Front. Toxicol. 3:657432 (2021), doi.org/10.3389/ftox.2021.657432.

7.Shinha K, Nihei W, Nakamura H, Goto T, Kawanishi T, Ishida N, Yamazaki N, Imakura Y, Mima S, Inamura K, Arakawa H, Nishikawa M, Kato Y, Sakai Y, Kimura H. A Kinetic-Pump Integrated Microfluidic Plate (KIM-Plate) with High Usability for Cell Culture-based Multi-Organ Microphysiological Systems. Micromachines. 2021, 12, 1007, doi:10.3390/mi12091007.

8.木村啓志, マイクロ流体デバイスを技術基盤とするOrgan-on-a-chipの臓器・疾患モデルへの応用 別冊 医学のあゆみ, 医歯薬出版, 2022, 62-67.

9.木村啓志, わが国におけるmicrophysiological system(MPS)の製品化に向けた取り組み, 実験医学2021年10月号, 羊土社, 2021, 39, 2569-2572.

10.榛葉健汰, 二瓶渉, 中村寛子, 河西巧, 後藤智美, 荒川大, 稲村恒亮, 西川昌輝, 加藤将夫, 酒井康行, 木村啓志. オンチップポンプ型多臓器Microphysiological system(MPS)を用いた臓器間相互作用の評価. 化学とマイクロ・ナノシステム. 2021, 20, 52-53.

11.Hauser PV, Chang H, Nishikawa M, Kimura H, Yanagawa N, Hamon M. Bioprinting Scaffolds for Vascular Tissues and Tissue Vascularization. Bioengineering(Basel.). 2021, 8, 178, doi:10.3390/bioengineering8110178.

12.Tsurusai S, Kanegae K, Tanaka M. In vivo analysis of Necrosis and Ferroptosis in Nonalcoholic Steatohepatits (NASH). Methods Mol Biol. 2022; 2455:267-278. doi: 10.1007/978-1-0716-2128-8_21.

13.Nguyen CH, Takahashi K, Yamamura M, Li Z, Sato Y, Yoshimura K, Kozaka K, Tanaka M, Nakamura Y, Harada K: Diversity in cell differentiation, histology, phenotype and vasculature of mass-forming intrahepatic cholangiocarcinomas. Histopathology. 2021; 79(5): 731-750. doi: 10.1111/his.14417.

学会・シンポジウム等における口頭・ポスター

1.酒井康行,マイクロフィジオロジカルシステムの現在と未来,第21 回日本再生医療学会総会,オンライン,2022.3.17,国内,口頭.

国内 / 口頭

2.Y. Sakai, Current status of MPS development and its international extension, 18th DIA Japan Annual Meeting, 東京,2021.10.25,国内・口頭.

国内 / 口頭

3.酒井康行,マイクロフィジオロジカルシステム(MPS)を用いた人体応答評価のために,JAACT2021シンポジウム,オンライン,2021.7.27,国内・口頭.

国内 / 口頭

4.Y. Sakai, K. Inamura, M. Danoy, B. Scheidecker, H. Kimura, M. Nishikawa, Use of an oxygen-permeable membrane in advanced in vitro tissue models both in static microplate and perfused MPS, 4th Symposium on Organoids and Organs-on-Chips, 2021.12.11, オンライン,国際・口頭.

不明 / 口頭

5.Y. Sakai, Importance of oxygen in advanced cell-based assays using microplates and microphysiogical systems, UTokyo - University and Institute in Stockholm, Online Workshop 2021.9.28, オンライン,国際・口頭.

不明 / 口頭

6.Y. Sakai, Liver on chip, Webinar Tissue and organ bioengineering, EUGLOH - European University Alliance for Global Health, 2021.4.8, オンライン,国際・口頭.

不明 / 口頭

7.榛葉健汰, 二瓶渉, 中村寛子, 河西巧, 後藤智美, 荒川大, 稲村恒亮, 西川昌輝, 加藤将夫, 酒井康行, 木村啓志, オンチップポンプ型多臓器Microphysiological system(MPS)を用いた臓器間相互作用の評価, Cheminas 43, 2021/5/18, 国内, ポスター.

国内 / ポスター

8.上田大貴, 榛葉健汰, 西川昌輝, 酒井康行, 木村啓志, 肝スフェロイドを導入した多臓器生体模倣システムの機能評価, Cheminas 43, 2021/5/18, 国内, ポスター.

国内 / ポスター

9.Yap JH, Zhang H, 岡村陽介, 木村啓志, 細胞培養可能な相分離法によるPDMS製多孔膜の開発, Cheminas 43, 2021/5/18, 国内, ポスター.

国内 / ポスター

10.木村啓志, マイクロ流体デバイスを基盤とする培養システムとイメージング技術との融合, 第9回 Chem-Bio Joint Seminar 2021, 2021/8/7, 国内, 口頭.

国内 / 口頭

11.Yap JH, Zhang H, Okamura Y, Kimura H, Thin porous PDMS membrane prepared by phase separation method and its applications for cell culture, AAAFM 2021, 2021/8/20, 国外, 口頭.

国外 / 口頭

12.Kimura H, Microphysiological systems based on microfluidics for cell-based assays, ISUPEN2021, 2021/8/31, 国外, 口頭.

国外 / 口頭

13.榛葉健汰, 二瓶渉, 中村寛子, 後藤智美, 西川昌輝, 酒井康行, 木村啓志, オンチップポンプ型多臓器Microphysiological system(MPS)を用いた薬剤評価試験, 日本機械学会2021年度年次大会, 2021/9/6, 国内, 口頭.

国内 / 口頭

14.上田大貴, 榛葉健汰, 西川昌輝, 酒井康行, 木村啓志, 肝スフェロイドを導入した多臓器生体模倣システムの機能評価, 日本機械学会2021年度年次大会, 2021/9/6, 国内, 口頭.

国内 / 口頭

15.Ito Y, Shinha K, Kimura H, Dialysis Membrane-Integrated Microphysiological System For Maintaining Cell Culture Environment, μTAS 2021, 2021/10/11, 国外, ポスター.

国外 / ポスター

16.Shinha K, Nihei W, Nakamura H, Kawanishi T, Arakawa H, Inamura K, Nishikawa M, Kato Y, Sakai Y, Kimura H, Evaluation Of Organs Interaction Using A Coculture Pump Plate, μTAS 2021, 2021/10/12, 国外, ポスター.

国外 / ポスター

17.木村啓志, マイクロ流体デバイスを技術基盤とするMicrophysiological Systemの実用化に向けた検討, 日本薬物動態学会第14回ショートコース, 2021/11/16, 国内, 口頭.

国内 / 口頭

18.木村啓志, 腎疾患創薬に向けた次世代創薬技術update, 第22回協和キリン腎臓シンポジウム, 2021/11/20, 国内, 口頭.

国内 / 口頭

19.Shinha K, Sakai Y, Kimura H, Microphysiological system (MPS) platforms with high operability and pumping capability for commercialization, MPS WORLD SUMMIT Virtual Conferences, 2021/12/9, 国外, 口頭.

国外 / 口頭

20.上田大貴, 榛葉健汰, 西川昌輝, 酒井康行, 木村啓志, 高次細胞アッセイ系としての肝細胞スフェロイド搭載型多臓器生体模倣システム, シンポジウム:細胞アッセイ技術の現状と将来, 2022/1/25, 国内, ポスター.

国内 / ポスター



更新日:2023-04-13

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