AMED研究開発課題データベース 日本医療研究開発機構(AMED)の助成により行われた研究開発の課題や研究者を収録したデータベースです。

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研究課題情報

研究課題名
異分野先端技術融合による薬剤抵抗性を標的とした革新的複合治療戦略の開発
課題管理番号
21cm0106203h0006
統合プロジェクト
医薬品プロジェクト
9つの連携分野プロジェクト
ジャパン・キャンサーリサーチ・プロジェクト
事業名
次世代がん医療創生研究事業
タグ(2021)
/研究の性格/医薬品・医療機器等の開発を目指す研究<医療機器開発につながるシステム開発を含む>
/開発フェーズ/応用
/承認上の分類/医薬品
/対象疾患/新生物
タグ(2020)
/研究の性格/医薬品・医療機器等の開発を目指す研究<医療機器開発につながるシステム開発を含む>
/開発フェーズ/応用
/承認上の分類/医薬品
/対象疾患/新生物
タグ(2019)
/研究の性格/研究基盤及び創薬基盤の整備研究<創薬技術・ICT基盤・プラットフォーム関係含む>
/開発フェーズ/該当なし
/承認上の分類/薬機法分類非該当
/対象疾患/新生物
タグ(2018)
/研究の性格/医薬品・医療機器等の開発を目指す研究<医療機器開発につながるシステム開発を含む>
/開発フェーズ/該当なし
/承認上の分類/薬機法分類非該当
/対象疾患/新生物
タグ(2017)
/研究の性格/研究基盤及び創薬基盤の整備研究<創薬技術・ICT基盤・プラットフォーム関係含む>
/開発フェーズ/該当なし
/承認上の分類/薬機法分類非該当
/対象疾患/新生物
タグ(2016)
/研究の性格/医薬品・医療機器等の開発を目指す研究<医療機器開発につながるシステム開発を含む>
/開発フェーズ/該当なし
/承認上の分類/薬機法分類非該当
/対象疾患/新生物
代表研究機関
国立大学法人東京大学
研究代表者
(2021) 山田泰広 , 国立大学法人東京大学 , 医科学研究所 先進病態モデル研究分野 教授
(2020) 山田泰広 , 国立大学法人東京大学 , 医科学研究所 教授
(2019) 山田泰広 , 国立大学法人東京大学 , 医科学研究所 教授
(2018) 山田泰広 , 国立大学法人東京大学 , 医科学研究所 先進病態モデル研究分野 教授
(2017) 山田泰広 , 国立大学法人京都大学 , iPS細胞研究所 教授
(2016) 山田泰広 , 国立大学法人京都大学 , iPS細胞研究所 教授
研究期間
2016年度-2021年度
課題への総配分額

(単位:千円)

  • 730,383
  • 2021年度
    85,000
  • 2020年度
    85,000
  • 2019年度
    123,440
  • 2018年度
    99,479
  • 2017年度
    152,464
  • 2016年度
    185,000
研究概要(2021)
iPS細胞技術を用いた細胞運命変化に着目したスクリーニングを行う。iPS細胞化抵抗性を指標としたがん細胞の増殖・生存に関わるコア・シグナルの同定法を、一般的ながん細胞株に加えて薬剤抵抗性がんおよび難治性希少がんに応用し、治療感受性シグナル、化合物の候補を同定する。スクリーニングから得られた治療候補化合物について、in vitro、in vivoでの薬効評価を行い、有効な化合物を絞り込む。ヒトiPS細胞を用いて難治性の希少小児がんである非定型奇形腫様/ラブドイド腫瘍の脳腫瘍モデルが既に作成できており、このヒトiPS細胞由来脳腫瘍モデルを分子病理学的に詳細に解析することで、治療標的の候補を同定する。多能性関連ネットワークを標的として、活性化に関わる分子基盤を明らかとし、治療標的分子を同定する。
研究概要(2020)
iPS細胞技術を用いた細胞運命変化に着目したスクリーニングを行う。iPS細胞化抵抗性を指標としたがん細胞の増殖・生存に関わるコア・シグナルの同定法を、一般的ながん細胞株に加えて薬剤抵抗性がんおよび難治性希少がんに応用し、治療感受性シグナル、化合物の候補を同定する。スクリーニングから得られた治療候補化合物について、in vitro、in vivoでの薬効評価を行い、有効な化合物を絞り込む。ヒトiPS細胞を用いて難治性の希少小児がんである非定型奇形腫様/ラブドイド腫瘍の脳腫瘍モデルを作成した。このヒトiPS細胞由来脳腫瘍モデルを分子病理学的に詳細に解析することで、治療標的の候補を同定する。多能性関連ネットワークを標的として、活性化に関わる分子基盤を明らかとし、治療標的分子を同定する。
研究概要(2019)
iPS細胞技術を用いた細胞運命変化に着目したスクリーニングを行う。iPS細胞化抵抗性を指標としたがん細胞の増殖・生存に関わるコア・シグナルの同定法を、ヒト薬剤抵抗性PDCに応用して、患者個々に異なる治療感受性シグナルを同定する。さらに、有効な治療薬が同定されていない希少がんに本スクリーニング法を応用し、治療感受性シグナルを同定する。これまでに同定された明細胞肉腫の治療候補化合物について、in vitro、in vivoでの薬効評価を検討し、有効な化合物を絞り込む。また、ヒトiPS細胞を用いて難治性の希少小児がんである非定型奇形腫様/ラブドイド腫瘍の脳腫瘍モデルを作成した。このヒトiPS細胞由来脳腫瘍モデルを応用して、CRISPR-Cas9を利用した多能性ネットワークを標的とした創薬スクリーニングを行う。iPS細胞技術を駆使して、患者個々に異なる治療抵抗性に対する分子標的療法の開発を目指す。
研究概要(2018)
iPS細胞技術を薬剤抵抗性CTOSおよびPDXに応用して革新的な創薬評価システムや種々の治療薬の個別化臨床効果予測システムを構築し、患者ごとに異なるがんの薬剤感受性に着目した画期的なスクリーニング法を開発する。
研究概要(2017)
iPS細胞技術を薬剤抵抗性CTOSおよびPDXに応用して革新的な創薬評価システムや種々の治療薬の個別化臨床効果予測システムを構築し、患者ごとに異なるがんの薬剤感受性に着目した画期的なスクリーニング法を開発する。
研究概要(2016)
iPS細胞技術を薬剤抵抗性CTOSおよびPDXに応用して革新的な創薬評価システムや種々の治療薬の個別化臨床効果予測システムを構築し、患者ごとに異なるがんの薬剤感受性に着目した画期的なスクリーニング法を開発する。

研究成果情報

【成果報告書】

成果の概要
本研究開発では、iPS 細胞技術と、CTOS 法,PDC および PDX を融合させ、薬剤抵抗性がんおよび希少難治がんを標的とした、患者個々における治療感受性シグナルの同定に基づく【分子標的】療法と、【免疫】療法の併用による複合的【個別化】治療法の創出を目指した。4つのグループが有する異なる先端技術を有機的に連携させて研究開発を行った。

【分子標的】iPS 細胞技術を応用した治療感受性シグナルの抽出を可能とするスクリーニング系を、実際の薬剤抵抗性がん細胞へ応用し、薬剤抵抗性がんを標的としたスクリーニングを行った(【個別化】への展開)。希少難治がんである明細胞肉腫細胞株でのスクリーニングから治療候補化合物、併用で効果的な化合物を同定した。耐性機構が未解明の ALK 融合遺伝子陽性肺がん細胞株に対してスクリーニングを行い、治療感受性候補化合物を抽出した。

【個別化】CTOS 内に分裂能・薬剤感受性の異なる細胞分画が存在すること、分画間に可塑性があり、分画間の移行は分子制御されていること、分画の割合に患者間多様性があることを明らかにした。分画間の移行は阻害剤によって抑制されるため、【分子標的】となり得る。緩慢分裂分画を単離することに成功し、創薬開発のためのプラットフォームを確立した。

【免疫】TCR 遺伝子を簡便かつ安全に iPS 細胞に導入する方法(TCR-カセット法)を開発し 2018 年に出願した。さらに TCR 遺伝子を再生した CTL に導入する方法(TCR-カクテル法)を開発し、2020 年 9 月に出願した。出願時には細胞株を用いたデータのみであったが 2021 年 9 月の PCT 出願に際しては iPS 細胞から再生した CTL に TCR 遺伝子を挿入するという実施例を追加した。また TCR 遺伝子の挿入する方法として出願時には CRE-lox を使う方法を示したがの他にゲノム編集法を用いる方法を実施例として示した。

【分子標的】肺がん・大腸がんおよび腺様嚢胞がんなどの稀少がん臨床検体からの PDX モデルおよび PDC(がん細胞株)を作製し、薬剤耐性機構、治療標的及び、治療法を新たに複数発見し、例えば ALK 陽性肺がんの治療抵抗性の芽となる治療残存と耐性細胞に共通したメカニズムを発見し論文発表した。また、樹立したPDC に iPS 細胞技術を応用した研究を研究代表者の山田らとの共研究成果として報告した。さらに、試験管内およびマウス同系モデルを用いて、免疫チェックポイント阻害薬抵抗性機構を見出し論文として発表した。
学会誌・雑誌等における論文一覧
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  • 1
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1.Hirano M, So Y, Tsunekawa S, Kabata M, Ohta S, Sagara H, Sankoda N, Taguchi J, Yamada Y, Ukai T, Kato M, Nakamura J, Ozawa M, Yamamoto T and Yamada Y. MYCL-mediated reprogramming expands pancreatic insulinproducing cells. Nature Metabol. 2022 Feb 10 doi:10.1038/s42255-022-00530-y.

2.Shimada-Takayama Y, Yasuda T, Ukai T, Taguchi J, Ozawa M, Sankoda N, Ohta S and Yamada Y. Generation of mice for evaluating endogenous p16Ink4a protein expression. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2022 Apr 9 9;599:43-50 doi:10.1016/j.bbrc.2022.02.005.

3.Taguchi J, Shibata H, Kabata M, Kato M, Fukuda K, Tanaka A, Ohta S, Ukai T, Mitsunaga K, Yamada Y, Nagaoka SI, Yamazawa S, Ohnishi K, Woltjen K, Ushiku T, Ozawa M, Saitou M, Shinkai M, Yamamoto T and Yamada Y. DMRT1-mediated reprogramming drives development of cancer resembling human germ cell tumors with features of totipotency. Nature Commun. 2021 Aug 19;12:5041 doi:10.1038/s41467-021-25249-4

4.Wakizono T, Nakashima H, Yasui T, Noda T, Aoyagi K, Okada K, Yamada Y, Nakagawa T, Nakashima K. Growth factors with valproic acid restore injury-impaired hearing by promoting neuronal regeneration. JCI Insight 2021 Nov 22;6(22):e139171 doi: 10.1172/jci.insight.139171.

5.Sakai H, Yamada Y, Kubota M, Imai K, Shirakami Y, Tomita H, Hara A, Shimizu M. The phosphorylated retinoid X receptor-α promotes diethylnitrosamine-induced hepatocarcinogenesisin mice through the activation of β-catenin signaling pathway. Carcinogenesis 2021 Oct 20;bgab099. doi: 10.1093/carcin/bgab099.

6.Rovira M, Atla G, Maestro MA, Grau V, Garcia-Hurtado J, Maqueda M, Mosquera JL, Yamada Y, Kerr-Conte J, Pattou F and FerrerJ. REST is a major negative regulator of endocrine differentiation during pancreas organogenesis. Genes Dev. 2021 Aug 12. doi: 10.1101/gad.348501.121.

7.Nakasuka F, Tabata S, Sakamoto T, HirayamaA, Ebi H, Yamada T, Umetsu K, Ohishi M, UenoA, Goto H, Sugimoto M, Nishioka Y, Yamada Y, Tomita M, Sasaki AT, Yano S, Soga T. TGF-β-dependent reprogramming of amino acid metabolism induces epithelial-mesenchymal transition in non-small cell lung cancers. Commun. Biol. 2021 Jun 24;4(1):782. doi: 10.1038/s42003-021-02323-7.

8.Coppo R, J Kondo J, Iida K, Okada M, Onuma K, Tanaka T, Kamada M, Ohue M, Kawada K, Obama K, Inoue M. Distinct and interchangeable growing patterns in colorectal cancer stem-like cells are regulated by Musashi-1. bioRxiv 2021. doi:10.1101/2021.11.25.469977

9.Onuma K, Sato Y, Okuyama H, Uematsu H, Homma K, Ohue M, Kondo J, Inoue M. Aberrant activation of Rho / ROCK signaling in impaired polarity switching of colorectal micropapillary carcinoma. J Pathol. 2021 255(1):84-94.

10.Tanaka M, Kondo J, Kaneko K, Endo H, Onuma K, Coppo R, Masuda M, Kamiura S, Yoshino K, Ueda Y, Kakeya H, Kimura T, Inoue M. Heterogenous chemosensitivity of a panel of organoid lines derived from small cell neuroendocrine carcinoma of the uterine cervix. Hum cell. 2021 34(3):889-900.

11.Terada K, Kondo K, Ishigaki H, Nagashima A, Satooka H, Nagano S, Masuda K, Kawamura T, Hirata T, Ogasawara K, Itoh Y, Kawamoto H, Agata Y. Isolation of TCR genes with tumor-killing activity from tumor-infiltrating and circulating lymphocytes in a tumor rejection cynomolgus macaque model. Mol Ther Oncolytics. 2021 Dec 6; 24:77-86. doi: 10.1016/j.omto.2021.12.003.

12.Kawamoto, H., Masuda, K., Nagano, S. Regeneration of antigen-specific T cells by using induced pluripotent stem cell (iPSC) technology. Int Immunol. 2021 Oct 18; 33(12): 827-833. doi: 10.1093/intimm/dxab091.

13.河本宏、増田喬子、永野誠治. 汎用性即納型 T 細胞製剤を用いたがん免疫細胞療法の開発. 腫瘍内科. 2021, 27(5), 570-578.

14.Shimizu Y, Okada K, Adachi J, Abe Y, Narumi R, Uchibori K, Yanagitani N, Koike S, Takagi S, Nishio M, Fujita N, *Katayama R. GSK3 inhibition circumvents and overcomes acquired lorlatinib resistance in ALK-rearranged non-small-cell lung cancer. NPJ Precis Onc. 6,16 (2022), doi: 10.1038/s41698-022-00260-0.

15.Tanimura K, *Yamada T, Okada K, Nakai K, Horinaka M, Katayama Y, Morimoto K, Ogura Y, Takeda T, Shiotsu S, Ichikawa K, Watanabe S, Morimoto Y, Iwasaku M, Kaneko Y, Uchino J, Taniguchi H, Yoneda K, Matoba S, SakaiT, Uehara H, Yano S, Kusaba T, Katayama R, and Takayama K, HER3 activation contributes toward the emergence of ALK inhibitor-tolerant cells in ALK-rearranged lung cancer with mesenchymal features. NPJ Precis Onc. 6,5(2022), doi: 10.1038/s41698-021-00250-8.

16.Sagawa R, Sakata S, Gong B, Seto Y, Takemoto A, Takagi S, Ninomiya H, Yanagitani N, Nakao M, Mun M, Uchibori K, Nishio M, Miyazaki Y, Shiraishi Y, Ogawa S, Kataoka K, Fujita N, Takeuchi K, *Katayama R. Soluble PD-L1 through alternative polyadenylation works as a decoy in lung cancer immunotherapy. JCI insight. 7(1):e153323, 2022. doi: 10.1172/jci.insight.153323.

17.Takagi S, Sasaki Y, Koike S, Takemoto A, Seto Y, Haraguchi M, Ukaji T, Kawaguchi T, Sugawara M, Saito M, Funauchi Y, Ae K, Matsumoto S, Fujita N, *Katayama R. Platelet-derived lysophosphatidic acid mediated LPAR1 activation as a therapeutic target for osteosarcoma metastasis. Oncogene, 2021, 40, 5548-58. doi: 10.1038/s41388-021-01956-6. doi: 10.1038/s41388-021-01956-6.

学会・シンポジウム等における口頭・ポスター

1.Yasuhiro Yamada, Unveiling dynamics of p16 and p21 expression in vivo, The 6th International Cell Senescence Association Conference, 2021/12/15, 国内, 口頭

国内 / 口頭

2.Yasuhiro Yamada, Dissecting germ cell tumorigenesis by studying in vivo reprogramming, CiRA2022 International Symposium, 2022/2/16, WEB 開催, 口頭

不明 / 口頭

3.Yasuhiro Yamada, Dissecting cancer biology by studying in vivo reprogramming, The 39th Sapporo International Cancer Symposium, 2021/7/7, 国内, 口頭

国内 / 口頭

4.Yasuhiro Yamada, Dissecting cancer biology by studying in vivo reprogramming, The 4th International Forum, 2021/10/16, Shenzhen, WEB 開催, 口頭

不明 / 口頭

5.山田泰広, リプログラミングによる生体内細胞運命制御を応用した医科学研究, 第 32回分子糖尿病学シンポジウム, 2021/12/11, 口頭

不明 / 口頭

6.井上正宏. Cancer tissue-originated spheroids 法の精密化医療への応用. 第 19 回日本臨床腫瘍学会学術集会 シンポジウム 11. 2022/2/17. 口頭

不明 / 口頭

7.小沼邦重, 井上正宏. 大腸がん転移におけるがん細胞集団の極性転換の役割. 患者由来がんモデル研究会. 2021/12/16. ポスター

不明 / ポスター

8.井上正宏. 機能的単細胞解析によるがん幹細胞多様性の解析. 患者由来がんモデル研究会 シンポジウム. 2021/12/15. 口頭

不明 / 口頭

9.井上正宏. 大腸がん幹細胞の多様性-オルガノイドの機能的単細胞解析-. 第 39 回日本ヒト細胞学会学術集会 シンポジウム. 2021/10/30. 口頭

不明 / 口頭

10.小沼邦重, 近藤純平, 井上正宏. 大腸がん転移におけるがん細胞集団の極性転換の役割. 第 80 回日本癌学会学術総会. 2021/10/2. ポスター

不明 / ポスター

11.Coppo Roberto, Jumpei Kondo, Masahiro Inoue. Molecular mechanism of regulating the growthstatus in cancer stem cells of colorectal cancer. 第 80 回日本癌学会学術総会. 2021/10/1. ポスター

不明 / ポスター

12.河田真由子, 近藤純平, 井上正宏. Src を介した卵巣癌細胞塊の極性転換の阻害と細胞外マトリックスへの接着抑制について. 第 80 回日本癌学会学術総会. 2021/9/30. ポスター

国外 / ポスター

13.清水翔太, 近藤純平, 井上正宏. BMP 阻害薬と MEK 阻害薬の併用は大腸癌の増殖を抑制する. 第 80 回日本癌学会学術総会. 2021/9/30. ポスター

不明 / ポスター

14.清水翔太, 近藤純平, 井上正宏. EGFR の制御を介した BMP 阻害による大腸癌増殖抑制. 第 30 回日本がん転移学会学術集会・総会. 2021/7/29. ポスター

不明 / ポスター

15.河田真由子, 近藤純平, 井上正宏. 卵巣癌細胞集塊の極性制御による腹膜播種抑制の試み. 第 30 回日本がん転移学会学術集会・総会. 2021/7/29. ポスター

不明 / ポスター

16.小沼邦重, 近藤純平, 井上正宏. 大腸がん転移におけるがん細胞集団の極性転換の役割. 第 30 回日本がん転移学会学術集会・総会 ワークショップ. 2021/7/29. 口頭

不明 / 口頭

17.Lin Yi-kai, 井上正宏. 大腸がん細胞集団における幹細胞の可塑性と Notch シグナルによる制御. 第 25回日本がん分子標的治療学会学術集会 ワークショップ 9B がん幹細胞・不均一性. 2021/5/28. 口頭

不明 / 口頭

18.iPS 細胞を材料とした即納型汎用性 T 細胞製剤の開発-がんおよびウイルス感染症への応用-, 河本宏, 大阪大学先導的学際研究機構 生命医科学融合フロンティア研究部門シンポジウム, 2022/3/28, 国内、口頭

国内 / 口頭

19.TCR カセット法の開発:iPS 細胞に安全かつ簡便に TCR 遺伝子を導入, 河本宏, 第 21 回日本再生医療学会総会, 2022/3/18, Web 開催, 口頭

不明 / 口頭

20.即納型 T 細胞製剤によるがん免疫療法の開発, 河本宏, 第 1 回京都大学ウイルス・再生医科学研究所附属ヒト E S 細胞研究センター シンポジウム, 2022/3/9, Web 開催, 口頭

不明 / 口頭

「国民との科学・技術対話社会」に対する取り組み
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1.ショートトーク「細胞を薬として使う時代が来た-がんやウイルスを退治する!-」, 河本宏, 免疫ふしぎ未来 2021, 2021/8/21, web 開催

不明



更新日:2023-04-13

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